肝动脉栓塞化疗术(TACE)已成为手术不能切除的肝细胞癌的首选疗法,但其5年生存率低于10%。研究表明[1,2],TACE后,肿瘤缺血缺氧,启动一系列促血管生成因子如VEGF、bFGF、PDGF等的产生,促进肿瘤新生血管的形成,使肿瘤得以继续生长、复发及转移。肿瘤血管生成是限制TACE疗效的关键所在。肿瘤血管的形成依赖血管内皮细胞的激活、增殖、吸附和成熟过程,这些过程都可以成为抗血管生成治疗强大作用靶点[3,4]。因此,若TACE与抑制血管生成相结合治疗肝癌,将会为肝癌介入治疗开拓崭新的前景。本实验就是用重组人血管内皮抑制素经肝动脉注入联合TACE治疗兔VX2肝癌,通过多层螺旋CT(MSCT)灌注成像与病理来分析治疗后肿瘤生长速度、肿瘤血供及微血管生成状况,从而对其疗效进行评估;同时对MSCT灌注成像参数与血管内皮生长因子(VEGF)、微血管密度(MVD)之间相关性进行探讨。
1.材料与方法
1.1 VX2肝癌兔模型制作:新西兰大白兔30只(南京金陵种兔场提供),体重2.5~3.0kg,雌雄不限。荷瘤种兔原购自华中科技大学,现本实验室将瘤细胞接种于兔后肢皮下成瘤并完成稳定传代。实验兔采用1%戊巴比妥钠(3ml/kg)经耳缘静脉注射麻醉。手术方法:剑突下略偏左作约1.5cm长切口,打开腹腔,暴露肝脏,用生理盐水湿润的纱布轻柔地将肝左叶拉出体外,经16号针头注入量约0.5ml备用瘤种(约1mm3瘤组织块与生理盐水混悬液),针尖刺入深度1~1.5cm左右,拔针时立即用盐水纱布压迫约15~20s后,确认穿刺点无瘤组织溢出,将肝脏回纳入腹腔,逐层缝合切口。缝合后碘孚消毒。术后连续四天(含手术当天)大腿外侧肌注青霉素预防感染。
1.2 VX2肝癌兔介入栓塞治疗:使用GE公司Innova3100平板DSA机,动物全麻下暴露股动脉并切开,置入4F导管鞘,沿鞘选入4F单弯导管,选入腹腔干行DSA,明确肝动脉走行后3FRenagade导管(Boston Scientific Inc.)超选入肝动脉,手推注入优维(300mg/100ml)约3ml,采集帧数4/s,摄影明确肝癌的供血情况。30只兔随机分为三组,每组10只:A组:经肝动脉灌注灌注重组人血管内皮抑制素注射液0.75 mg(0.25mg/kg)(商品名恩度TM表阿霉素3mg(1mg/kg)+碘化油混合液0.6ml;B组:经肝动脉内灌注表阿霉素3mg(1mg/kg)+碘化油混合液0.6ml;C组为对照组,于肝动脉内灌注同等剂量生理盐水。术毕拔除导管及鞘管的同时结扎股动脉近端,缝合切口。缝合后予碘孚消毒。 EndostarTM 代号:YH-16,先声麦得津公司)+
1.3 MSCT扫描:使用Siemens 64层螺旋CT机,30只VX2肝癌兔于治疗前(即接种VX2肿瘤组织2周后)行CT平扫,观察肿瘤生长情况。扫描条件:管电压120kV,管电流120mA,矩阵512 x 512,扫描视野(FOV )12-16cm,层厚2.0mm。于治疗后两周进行MSCT灌注扫描。检查当日兔禁食12h以上,将其麻醉后仰卧位固定于木板上,扎腹带以减少呼吸运动,先行常规CT平扫,选取肿瘤最大层面的相邻4层为灌注层面。扫描前于兔耳缘静脉插人静脉输液针(21GA x 0.75IN),用高压注射器以1.0 ml/s速度注入对比剂碘海醇(350mg/ml)5ml,自对比剂开始注入后延迟5s连续无间断扫描40s。扫描条件:层厚7.2 mm,电压120 kV,电流100mA。将灌注扫描所得图像传到工作站,用BODY PCT中的肝脏灌注软进行后处理,得到灌注伪彩功能图。选取肝肿瘤最大两层相邻层面,用不规则画法选定感兴趣区,然后读取BV、BF、PS灌注参数值,取两层面所得参数平均值。ROI范围尽可能大,且尽量避开肿瘤中央坏死区域及周围正常肝组织,在肿瘤边缘选取。
1.4 病理标本制备及免疫组织化学检查:三组动物均于MSCT灌注扫描完后立即处死,切取癌灶周边非坏死区及其周围肝组织,用4%中性甲醛固定24h后石蜡包埋,尽量取与灌注扫描层面相同切面且肿瘤边缘组织切片。抗兔CD31与VEGF抗体成套染色系统均由天津灏阳生物有限公司提供,产地为cellsc-ience。由病理科专职技术员作HE染色及MVD、VEGF免疫组化染色。VEGF表达测定:肿瘤细胞胞质或胞膜出现棕黄色颗粒为阳性细胞,在400倍光镜下取3个视野采用计数网格(统计场面积为114.3μm×114.3μm),对网格内阳性染色的细胞进行计数,取其平均数为该病例的VEGF阳性染色细胞数。MVD记数参照Weidner等[5]的方法并加以改进:每张切片先在40倍视野下观察整张切片的血管分布情况,然后选取癌灶的5个微血管最丰富的区域,即“热点”,在200倍视野下进行计数。任何黄染的细胞或细胞簇即使未显示管状结构只要和邻近的微血管、肿瘤细胞或其他结缔组织分开均计为1个血管,取其平均值。
1.5 统计学分析:计量资料变量分析采用ANOVA,多组的两两间比较采用LSD检验,相关性分析采用Person检验。统计学软件使用SPSS12.0软件。
2.结果
2.1 治疗前后肿瘤体积及生长速率情况(表1)
三组于治疗前体积差异无统计学意义(分别1572.4±881.7mm3、1613.4±489.8mm3、1643.1±1043.0 mm3,P=0.999)。治疗两周后,三组肿瘤体积均较前增大,中央均有明显坏死,但重组人血管内皮抑制素灌注联合TACE组与单纯TACE组治疗后肿瘤体积及生长率明显较对照组小(分别为7407.2±3640.1 mm3、512.6±299.2%;8033.0±2526.3 mm3556.7±267.8%;19482.7±3829.5 mm3、1451.2±613.4%),差异有统计学意义(P<0.01、P<0.05),而重组人血管内皮抑制素灌注联合TACE组与单纯TACE组治疗后肿瘤体积及生长率组间差异无统计学意义(P>0.05)。
2.2 治疗后三组肿瘤周边灌注参数值比较(表2)
重组人血管内皮抑制素灌注联合TACE治疗后肿瘤周边血流量(blood flow, BF)、血容量(blood volum,BV)、血管表面渗透面积(permeability surface area product,PS)值均较单纯TACE与对照组增高(BF分别为:76.89±17.93、56.78±14.3658.03±13.37ml/min/100ml,BV分别为6.63±1.56、4.80±1.44、4.98±1.25ml/100ml;PS分别为34.61±14.79、22.46±11.22、23.48±10.13 ml/min/100ml),差异有统计学意义(P<0.05)。单纯TACE组与对照组肿瘤周边BF、BV、PS值均没有统计学差异(P>0.05)。
2.3 治疗后肿瘤周边病理参数MVD、VEGF的变化(表2)
免疫组织切片经CD31单克隆抗体标记后,在肿瘤组织及其邻近间质内,肿瘤血管内皮细胞胞膜或胞质内呈棕黄色着色。VEGF主要表达在细胞胞浆内,阳性细胞见胞质或胞膜出现棕黄色颗粒。重组人血管内皮抑制素灌注联合TACE治疗后,肿瘤微血管稀少,且以类圆形管腔结构为主(见图4);VEGF阳性细胞散在分布,MVD、VEGF表达值分别为16.3±10.7/200倍视野、51.6±16.2/400倍视野。而单纯TACE后及对照组见肿瘤组织及邻近间质内微血管多而密集,以单个内皮细胞或裂隙样内皮细胞簇结构为主(见图5);VEGF阳性细胞弥漫分布于癌巢中(见图6)。单纯TACE组及对照组MVD、VEGF表达值分别为68.4±15.6个/200倍视野、143.9±47.6个/400倍视野;56.3±17.3个/200倍视野、128.2±43.1个/400倍视野。重组人血管内皮抑制素灌注联合TACE治疗组MVD、VEGF表达均较单纯TACE组、对照组显著减低,差异有统计学意义(P<0.01),单纯TACE组较对照组MVD、VEGF表达虽增高,但差异没有统计学意义(P>0.05)。
2.4 肿瘤周边灌注参数值与MVD、VEGF相关性分析(表3)重组人血管内皮抑制素灌注联合TACE治疗组BF、BV、PS分别与MVD、VEGF表达均呈线性正相关(P<0.05),而单纯TACE组及对照组中BF、BV、PS与MVD、VEGF表达无简单线性相关性(P>0.05)。三组中MVD、VEGF均呈显著正相关(P<0.01)。
表1 三组肿瘤体积及生长速率
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治疗前体积(mm3) 治疗后体积(mm3) 生长率(%) |
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恩度+TACE 1572.4±881.7 7407.2±3640.1 512.6±299.2
单纯TACE 1613.4±489.8 8033.0±2526.3 556.7±267.8
对照组 1643.1±1043.0 19482.7±3829.5 1451.2±613.4
P值 0.999 0.001 0.020 |
表2 治疗后三组肿瘤周边灌注参数值及MVD、VEGF表达情况
表3 肿瘤周边BF、BV、PS与MVD、VEGF相关性
3.讨论
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